另外,全球还有6款药物已注册,市场未来5-6年内预计市场上会出现约12款CAR T药物。
CAR候选分子发现
CAR T细胞构建
CAR T功能验证
CAR T免疫治疗通过CAR识别肿瘤细胞,并释放细胞因子,发挥抗肿瘤作用。CAR主要由胞外结构域、跨膜结构域和胞内结构域组成。胞外结构域中的单克隆抗体的单链可变片段(scFv)可决定抗原的特异性和亲和力,跨膜结构域可影响CAR在细胞表面表达,胞内结构域中共刺激域与信号转导结构域则起到信号活化转导使T细胞发挥杀伤力的作用。其中,特异性好、亲和力高的抗体制备工艺,将有助于筛选到副作用小、杀伤作用强的CAR序列。
金斯瑞MonoRab™兔单克隆抗体亲和力高
(Biacore检测抗原-抗体亲和力)
金斯瑞MonoRab™兔单克隆抗体多样性好
(表位归类)
实验结果:表位归类结果表明16个克隆分属于11个不同的表位,表明金斯瑞MonoRab™兔单克隆抗体多样性好。其中2F8抗体KD可达10-12M,表明其亲和力高。
*金斯瑞可交付KD数值高达10-10M水平的鼠单克隆抗体,亲和力高、多样性好,易于后续人源化开展。
在将CAR序列整合至T细胞的过程中,利用病毒递送基因,存在CAR序列会随机插入细胞基因组任意位置的风险。可能干扰整个基因组功能、影响随机插入位点附近的功能基因表达。
CRISPR基因编辑技术具有优越的灵活性与编辑效率,较之慢病毒转染递送序列的方案,CRISPR不仅可以更安全的实现在特定位点插入CAR序列,还可以敲除PD1、TRAC、TRBC等多个基因,同时工艺更简单经济。目前,“CAR T之父”Carl H. June教授在内的一些团队已经在临床试验中获得了部分基于CRISPR技术制备的CAR T细胞安全有效的证据。这些优势使得CRISPR技术在下一代CAR T细胞制备工艺中展现出巨大潜能。编辑效率高、脱靶效应低、细胞毒性低的CRISPR试剂将使该技术路线如虎添翼。
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金斯瑞EasyEdit sgRNA编辑效率高 (VS IVT sgRNA)
金斯瑞-GenExact™ ssDNA敲入效率高
战略合作!金斯瑞Basic GMP sgRNA支持北恒生物通用型CAR T申报
CAR敲入效率46.2%!金斯瑞GenExact™ ssDNA支持BCMA-CAR临床试验
构建完成的CAR T细胞即可进入功能验证环节,例如通过CAR表达量检测确认效应CAR T细胞制备效果、通过肿瘤细胞杀伤实验检测CAR T细胞体外药效、通过模式动物评估CAR T细胞体内安全性与药效、通过监控体内CAR T细胞含量变化考察药代药动信息等等,这些都将为CAR T细胞的成药性提供重要依据。金斯瑞细胞系构建服务可以提供检测模型、抗独特型抗体服务可以提供检测试剂,支持功能验证阶段的不同CAR T细胞的定制化需求。
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构建表达细胞系-通过FASC检测荧光值检测不同CAR序列表达量
构建效应/靶细胞系-检测不同CAR序列的CAR T细胞对肿瘤细胞杀伤活性
结论:CAR1序列表达量更高、杀伤效果更优好,可作为候选序列开展后续开发工作
CAR T细胞在临床抗肿瘤、尤其是血液肿瘤领已经取得了丰硕成果,然而现阶段仍存在抗实体瘤的局限、细胞因子风暴等副作用、制备周期和费用成本较高等问题,也催生了以CAR NK、CAR 巨噬细胞等新方向的研究快速发展,这些新方向又有什么与众不同的特点呢?
NK细胞通过慢病毒转染或基因编辑添加CAR结构后,同样能够特异识别肿瘤细胞,通过释放杀伤介质、诱导靶细胞凋亡等途径杀伤肿瘤细胞。FDA已批准临床多个CAR NK在血液肿瘤与实体瘤中临床研究,CDE也于2021年11月批准首个“现货型”异体来源的CAR-NK产品的临床试验申请,用于治疗晚期上皮性卵巢癌。
巨噬细胞是人体免疫中核心细胞之一,具有对体液和组织中的细胞残片及病原体的吞噬及消化作用,并通过抗原呈递功能激活淋巴球或其他免疫细胞,使其对病原体作出反应。添加CAR后的巨噬细胞能够准确识别肿瘤细胞,进而吞噬肿瘤细胞,同时表达促炎细胞因子和趋化因子,将“旁观者”M2型巨噬细胞转化为M1型 。CAR-巨噬细胞还可以将癌细胞抗原碎片呈递给T细胞,激活T细胞,并抵抗免疫抑制细胞因子的作用。
2021年9月23日,CARISMA Therapeutics宣布美国FDA已授予该公司靶向人表皮生长因子受体2 (HER2) 的嵌合抗原受体-巨噬细胞(CAR-M)疗法CT-0508快速通道资格,用于治疗实体瘤。
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